关于实验室内一些玻璃器皿的正确使用方法

　　在实验室中我们经常会使用到各种玻璃器皿，这些器皿的作用各不相同，也有一些特别的器皿只在特定的实验中才会使用到。粗分一下，就会被种类繁多的这些“玻璃瓶子”给吓到，如果我们把它放到一起，无论数量还是种类都是非常吓人的。有鉴于此，普健生物今天在这里和大家具体聊聊一些常用器皿的使用方法。

　　1、容量瓶

　　如果用来定容水溶液，那么在用蒸馏水清洗之后不用特意拿去干燥。稀释水溶液，我们需要将待溶解的物质放入烧杯内，必要时可以进行晃动，促使其溶解。之后，再将溶液转移到容量瓶中，最后加水至刻度线下几厘米处。静置2分钟后，载加入一定量的水使其最低点到刻度线上，摇晃容量瓶，使溶液充分混合;

　　2、量杯和量筒

　　量杯和量筒在清洗之后需要进行干燥，在加入的溶液达到刻度线以下1厘米甚至几毫米的时候，采用吸管沿着杯壁缓慢滴下;

　　3、滴定管

　　滴定管(包括旋塞阀和流液口)在用蒸馏水清洗之后，用待用的试液冲洗三次。如果滴定管尺寸不够大，其顶部插不进温度计用于观测液体温度，可设置一根足以容纳温度计的普通玻璃试管夹在滴定管旁边;

　　4、量出式吸量管

　　吸量管用蒸馏水清洗之后，同样的需要用待用的液体冲洗一至两次。之后用吸量管吸取液体至零标线以上或所需刻度线以上几毫米。在吸量管与接收容器脱离之前，需等待的规定时间一定要达到。通常来说，吸量管挂壁液体流至流液口的等待时间达到3s就已完全足够，完全不用准确地特别测定。当我们确定弯液面达到了流液口且趋于静止后，吸量管即可与接收容器脱离。残留的流液口余液不得排出，而“吹出”式吸量管则应吹出其最后余液作为量出容量的一部分;

　　5、量入式吸量管

　　用蒸馏水清洗之后进行干燥或直接用待测溶液冲洗三次。吸取液体至零标线以上或所需刻度线以上。为了得到正确的量入容量，吸量管应按有关容量定义所述方法操作。

　　总的来说，每个玻璃器皿的使用都需要遵循相应的规范，这样才能减少相应的误差。同时，玻璃器皿需要保持一直，这样才能在一定程度上保证其精确性。普健生物专业为广大用户提供优质的蛋白抗体生产服务，如果您有相关需求，欢迎来电咨询。